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常见小鼠给药及采血方法_小鼠灌胃小鼠灌胃方法比较简单

   2022-05-04 17490
核心提示:常见小鼠给药及采血方法
 常见小鼠给药及采血方法
 
小鼠灌胃
小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;
  二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。做的多了自然就熟练了。
具体操作过程如下:
1. 准备灌胃针头。一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大。
2.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。因为小鼠始终在活动中,若一次抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。
3. 抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了。(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况下。)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。
4. 灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。
小鼠腹腔注射
腹腔注射是常见的给药方式,尤其是在麻醉时。常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用1ml的注射器,配合4号针头。
2. 腹腔注射时右手持注射器,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部,使小鼠的头部向下。这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部,防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。进针的动作要轻柔,防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠,腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离,最好是从腹部一侧进针,穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔,注射完药物后,缓缓拔出针头,并轻微旋转针头,防止漏液。
4. 小鼠腹腔注射的给药容积一般为5~10ml/kg。
小鼠静脉注射
这也是常见的操作,稍微有点难度,没有指导的话,一开始可能会感觉有点手足无措。但是可以肯定的说,只要掌握了方法,小鼠的尾静脉注射还是很容易的。
操作步骤:
1. 首先要固定小鼠,最简单的固定方法就是把小鼠放在盒子里面,让它的尾巴伸在盒盖的外面,用手抓住小鼠尾巴,轻轻往外拽,就可以固定好小鼠了。这种固定方法,小鼠可以在盒子里面活动,固定的也不是很牢固,但是只要你尾静脉注射的手法很熟练,就足以用来注射了。
还有的固定方法就是用一个小的圆筒,最好是金属做的,(可以在当地的铁匠铺,或者买白铁铺里面定做)首先是金属比较结实,而且可以用来固定在铁架台上,方便操作。圆筒的一段有个盖子可以拿下来,盖子中间有个小孔,可以让小鼠的尾巴伸出来(中间的小孔可以用胶布缠一下,防止锐利的边缘割伤小鼠尾巴)。另外一段可以用金属网的结构,网的形状可以做成子弹头的头端形状。网状结构可以让光线透近来,方便小鼠钻进圆筒里面。圆筒的长度约10cm,直径约3~4cm,可以做个系列长度和直径的圆筒,适合不同大小的小鼠。
2. 固定好小鼠后就是注射了,一般用一次性的1ml的注射器就可以了,玻璃 的1ml的注射器也可以用,针头用4号的就可以了。
3. 注射前首先要让小鼠的血管充盈。可以采用75%的酒精棉球擦拭的方法或者采用温水浸泡的方法。若小鼠的血管很不清楚,推荐采用温水浸泡的方法,水温以不烫手为宜。温水浸泡2~3分钟后,取出小鼠尾巴,用干棉球擦拭。等一会儿,待血管充盈后,酒精棉球擦拭后就可以进针了。若血管还不充盈,可以反复用温水浸泡,切不可冒险注射,除非你手法很熟练,另当别论。
4. 小鼠尾部共有四条血管,一般认为左右的两条静脉比较容易注射,多采用这两条静脉进针。一般要求进针部位靠近小鼠的尾端,这样若注射失败的话,还可以再向上选择进针点。但是进针部位也不可以太靠下,因为越往下,静脉越细,操作越难,一般以小鼠尾巴下三分之一的位置比较好。
5. 最关键的就是进针了。进针时操作者左手食指和拇指固定住小鼠的尾巴,让小鼠的尾巴在经过拇指后向下弯曲,进针点靠近拇指指甲。针头和血管呈约30°角,针尖斜面朝上,轻轻挑刺入皮肤后针头立即和血管平行,一般情况下一次就可以进入血管,可以将针头刺入血管一大半,左右轻轻晃动针头,确定针头在血管内,就可以推注药液了,正常情况下,推注的过程应该没有明显阻力,血管也不会鼓起。推液时动作宜轻柔,若发现血管鼓起,那是针头没有刺入血管,需立即拔出针头。
皮下注射给药
将药液推入皮下结缔组织,经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环的过程。作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。操作时,常规消毒注射部位皮肤,然后将皮肤提起,注射针头取一钝角角度刺入皮下,把针头轻轻向左右摆动,易摆动则表示已刺入皮下,再轻轻抽吸,如无回血,可缓慢地将药物注入皮下。拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻,以防止药物外漏。注射量约为0.1~0.3ml/10g体重。
皮内注射给药
将药液注入皮肤的表皮河真皮之间,观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应,接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位的被毛剪掉,局部常规消毒,左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧,在两指之间,用结核菌素注射器连接4.5针头穿刺,针头进入皮肤浅层,再向上挑起并梢刺入,将药液注入皮内。注射后皮肤出现一白色小皮丘,而皮肤上的毛孔极为明显。注射量为0.1ml/次。
肌肉注射给药
小鼠体积小,肌肉少,很少采用肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时,采用肌肉注射。操作时1人固定小鼠,另一人用左手抓住小鼠的1条后肢,右手拿注射器。将注射器与半腱肌呈90°角迅速插入1/4,注入药液,用药量不超0.1ml/10g体重。
静脉注射给药
将小鼠放在金属笼或鼠夹中,通过金属笼或鼠夹的孔拉出尾巴,用左手抓住小鼠尾巴中部。小鼠的尾部有2条动脉和3条静脉,2条动脉分别在尾部的背侧面和腹侧面,3条静脉呈品字型分布,一般采用左右两恻的静脉.拔去沿尾部静脉走向的毛,置尾巴于45~50℃温水中浸泡几分钟或用75%酒精棉球反复擦拭尾部,以达到消毒和使尾部血管扩张及软化表皮角质的目的。行尾部静脉注射时,以左手拇指和食指捏住鼠尾两恻,使静脉更为充盈,用中指从下面托起尾巴,以无名指夹住尾巴的末梢,右手持4号针头注射器,使针头与静脉平行(小于30°角),从尾巴的下1/4处进针,开始注入药物时应缓慢,仔细观察,如果无阻力,无白色皮丘出现,说明已刺入血管,可正式注入药物。有的实验需连日反复尾静脉注射给药,注射部位应尽可能从尾端开始,按次序向尾根部移动,更换血管位置注射给药。注射量为0.05~0.1ml/10g体重。拔出针头后,用拇指按住注射部位轻压1~2min,防止出血。
小鼠采血
1.剪尾采血
手拇指和食指从背部抓住小鼠颈部皮肤,将小鼠头朝下,小鼠保定后将其尾巴置于50°热水中浸泡数分钟,使尾部血管充盈。擦干尾部,再用剪刀或刀片剪去尾尖1~2mm,用试管接流出的血液,同时自尾根部向尾尖按摩。取血后用棉球压迫止血并用6%液体火棉胶涂在伤口处止血。每次采血量0.1ml。
2.摘除眼球采血
左手抓住小鼠颈部皮肤,轻压在实验台上,取侧卧位,左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压,使眼球突出。用眼科弯镊迅速夹去眼球,将鼠倒立,用器皿接住流出的血液。采血完毕立即用纱布压迫止血。每次采血量0.6~0.1ml。
3.心脏采血
小鼠仰卧位固定,剪去胸前区被毛,皮肤消毒后,用左手食指在左侧第3~4肋间触摸到心搏处,右手持带有4~5号针头的注射器,选择心搏最强处穿刺,当刺中心脏时,血液会自动进入注射器。每次采血量0.5~0.6ml。
4.断头采血
动物医学论坛右手用剪刀剪断小鼠颈部约1/2~4/5,让血液流入试管。此法可采血0.8~1.2ml。
 
 
——毒性试验给药方法之注射给药法
 
 
  
 
(1)皮下注射  皮下注射较为简单,一般取背部及后腿皮下,小鼠通常在背部皮下注射,将皮肤拉起,注射针刺入皮下,把针尖轻轻向左右摆动,容易摆动则表明已刺入皮下,然后注射药物。拔针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏。熟练者可把小鼠放在金属网上,一只手拉住鼠尾,小鼠以具习惯向前方移动,在此状态下,易将注射针刺入背部皮下,注射药物。此法可用于大批量注射,注射药量0.1~0.3ml/10g。
 
 
 
小鼠皮下注射
 
豚鼠、大鼠等背部皮肤较厚,注射器针头不易进入,硬进容易折断计头,因此给它们注射时不应选用背部皮肤。一般豚鼠在后大腿内侧;大鼠可在左侧下腹部。
(2)皮内注射  此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察出内反应。将动物注射部位的毛剪去,酒精消毒,用卡介苗注射器带4号细针头沿皮肤表浅层插入,随之慢慢注入一定量的药液。当溶液注入皮内时,可见到皮肤表面马上会鼓起桔皮样小泡,同时因注射部位局部缺血,皮肤上的毛孔极为明显。此小泡如不很快消失,则证明约液确实注射在皮内;如很快消失,就可能注在皮下,应重换部位注射。
(3)肌肉注射  此法比皮下和腹腔注射用得较少,但当给动物注射不溶于水而混悬于油或其它溶剂中的药物时,常采用肌肉注射。注射时,应选择动物肌肉发达部位注射。大鼠、小鼠、豚鼠因其肌肉较小,不常作肌肉注射,如需肌注,可注射入大腿外侧肌肉。用5~6号针头注射,小鼠每腿不超过0.1m1。
 
 
 
(4)腹腔注射  小白鼠腹腔注射时,左手固定好动物,将腹部朝上,右手将注射器的针头在下腹部腹白线稍向左的位置,从下腹部朝头方向刺入皮肤,针头到达皮下后,再向前进针3~5mm接着使注射针与皮肤呈45°角刺入腹肌,针头通过腹肌后抵抗消失,在此处保持针尖不动的状态下,回抽针栓,如无回血或尿液,再以一定的速度轻轻注入药液。如注射针一下子刺入腹腔内深部或摆动针头时,可能刺伤内脏,或注射液从穿刺部位漏出来。为避免刺伤内脏,可将动物头部放低,使脏器移向横膈处。小鼠的一次注射量为10~20ml/kg(体重)。
 
 
 
大鼠腹腔注射与小鼠相同。注射量为10~20ml/kg(体重)。
(5)静脉注射  根据鼠的种类选择注射血管的部位。一股选择容易插入注射针的血管。因为是通过血管内给药,所以只限于液体药物,如果是混悬液,可能会因悬浮粒子较大而引起血管栓塞。
大小鼠一般多用尾静脉,注射前先将动物装入固定盒内固定好,使其尾巴露出,尾部用45~55℃温水浸泡1~2min或用75%酒精棉球檫之,便血管扩张,以使表皮角质软化,以无名指和食指捏住尾根部的左右侧,使血管更加扩张,尾部静脉显得更清楚,以无名指和小指夹住尾端部,以中指从下面托起尾巴,以使尾巴固定,用4号针头从左右两静脉注入。针头在尾静脉内平行推进少许,左手的三指捏住尾巴,并连针头和鼠尾—起捏住,以防动物活动时针头脱出。如针确已在血管内,则药腋进入无阻,否则隆起发白出现皮丘,可拔出针头再移向前插入。注射完毕后,随即用左手拇指按住注射部位,右手放下注射器,取一棉球裹住注射部位并轻轻揉压,使血液和药液不致流出。需反复静脉注射 时,尽可能从尾端开始,按次序向尾根部移动注射;一次注射量为5~10ml/kg(体重)。
 
 
 
尾静脉注射的要点是:注射前尾静脉尽量充血;要用较细的针头;针头刺入后,一定要使其与血管走向平行;当针头进入顺利无阻时,必须把针头和鼠尾—起固定好,不要晃动,以免出血造成血肿或溶液溢出;注射部位尽量选用尾静脉下1/3处,因此处皮薄,血管较易注入。
大鼠尚可切开皮肤注射于股静脉或颈外静脉,但需麻醉进行。
 
 
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